Закрыть
Вход
facebook youtube instagram
instagram youtube facebook

Плазмотерапия: когда пробирка решает все

10.03.2021
2306
4 мин на прочтение
Поговорим о том, как на эффективность PRP-терапии влияет такой инструмент врача, как пробирка, и выбор антикоагулянтов

Богатая тромбоцитами плазма (БоТП, PRP) используется во многих областях медицины из-за доказанного положительного воздействия на трофику тканей.

БоТП применяется и изучается с 1970-х гг. и внедрена в стандартную клиническую практику в дерматологии, пластической хирургии, стоматологии, ортопедии, акушерстве и гинекологии1.

В регенеративной медицине БоТП используется с момента установления ее эффективности при регенерации тканей2. Ее широкое применение обусловлено доступностью, аутологичным характером, исключающим иммунный ответ, легкостью использования, низкой стоимостью по сравнению с другими методами регенеративной медицины. В дерматологии и косметологии PRP используется для лечения акне, рубцов и алопеции (особенно у женщин)3. Она также эффективна для омоложения кожи лица, подтяжки кожи вокруг глаз, как подготовительный этап перед сложными процедурами (аппаратные методики), а также в качестве посттерапии.

БоТП представляет собой плазму с высоким содержанием тромбоцитов, получаемую посредством центрифугирования периферической крови4.

Тромбоциты несут в себе более 800 видов белковых молекул, цитокинов, гормонов и хемоаттрактантов5 и содержат три вида гранул: альфа-гранулы, плотные гранулы и лизосомы6. Активация тромбоцитов индуцирует выпуск различных биологически активных белков, стимулирующих пролиферацию, рост и дифференцировку клеток7. Выпускаемые активированными тромбоцитами биологически активные медиаторы включают в себя тромбоцитарный фактор роста (ТФР), трансформирующий ростовой фактор бета (ТРФ-β), фактор роста фибробластов (ФРФ), эпидермальный фактор роста (ЭФР), инсулиноподобный фактор роста 1 (ИФР-1) и фактор роста гепатоцитов (ФРГ).

Эти факторы роста модулируют пролиферацию, дифференцирование, ангиогенез и хемотаксис клеток, анаболизм, контролируют воспалительный процесс8.

Когда БоТП посредством крошечных проколов вводится в поврежденную область, она стимулирует ткань, вызывая легкое воспаление, которое запускает каскад заживления. В результате начинает вырабатываться новый коллаген. По мере созревания этот коллаген начинает сжиматься, подтягивать и укреплять кожу9.

Ключевые факторы успешного применения БоТП:

  • количество мононуклеарных клеток в конечном препарате;
  • качество (низкий титр поврежденных клеток).

Сегодня врачам доступно множество готовых наборов для проведения плазмотерапии, имеющих различные системы сепарации БоТП.

Различие между ними заключается в содержании тромбоцитов, лейкоцитов и факторов роста в конечном препарате, их разделении, а также в стерильности10.

Разным системам для работы требуется разный объем крови, при этом при заборе он не всегда коррелирует с количеством получаемых тромбоцитов.

Исследования показывают, что в идеале БоТП должна содержать в 4–7 раз больше тромбоцитов, чем циркулирующая кровь11. Помимо количества тромбоцитов, на степень противовоспалительного эффекта и терапевтическую успешность инъекций БоТП влияют количество мононуклеарных клеток, нейтрофилов и эритроцитов12.

Во избежание развития воспаления предпочтительно использовать также препараты, содержащие исключительно тромбоциты, без нейтрофилов и эритроцитов13.

Недавно в России появились наборы для плазмотерапии T-LAB от турецкой компании T-Biotechnology Laboratory (Стамбул, Турция; сертификат РУ № РЗН 2020/12523).

T-LAB PRP TUBE

Теоретические разработки, лежащие в основе производства T-LAB, были признаны в числе лидеров отрасли исследовательским центром Grand View Research Company (Сан-Франциско), а в 2018 году компания была номинирована на премию «Глобальный рынок PRP» наряду с восемью другими мировыми производителями.

Все производственные процессы выполняются в рамках системы качества ISO 13485, производство пробирок соответствует международному стандарту ISO 8.

Компания более десяти лет проводит испытания своих наборов.

Эффективность пробирок T-LAB подтверждена в ряде исследований Mishra et al.14, которые показали, что набор обеспечивает в 4,75 раза более высокую концентрацию тромбоцитов по сравнению с кровью. В исследовании две пробирки по 10 мл из набора центрифугировали при 1500 x g в течение 8 минут, и было получено 4 мл БоТП.

Расчеты, выполненные посредством сопоставления содержания тромбоцитов, красных кровяных телец и лейкоцитов с учетом объема собранной крови и полученной БоТП, показали, что набор компании T-LAB позволяет посредством центрифугирования с рекомендованными производителем параметрами получать БоТП в объеме больше среднего (4,5 мл) относительно других изделий.

Коэффициент соотношения концентрации лейкоцитов к тромбоцитам соответствует одним из наименьших значений, зафиксированных в доступной литературе, что позволяет определить получаемую с помощью набора T-LAB БоТП как обедненную лейкоцитами15.

Еще одним важным аспектом применения БоТП является получение стерильного препарата. Методы работы с БоТП вручную могут создавать угрозу бактериального загрязнения при получении препарата16. В большинстве продуктов не содержится антикоагулянт, а потому его требуется добавлять.

Наборы Т-LAB содержат антикоагулянт на основе цитрата натрия, что исключает риск загрязнения. Тесты показали, что изделия T-LAB позволяют достигать чистоты > 90 %; лишь 7 из 36 описанных в существующей литературе изделий характеризуются схожими показателями.

Преимущества набора T-LAB PRP

  • Не имеет в составе разделительный гель, который может стать причиной аллергической реакции при введении плазмы;
  • Стерилизован гамма-излучением;
  • Имеет в составе пробирки самый безопасный антикоагулянт – цитрат натрия, в соответствии с требованиями безопасности ЕС (REGULATION No 1272/2008);
  • Подходит к центрифугам типа ЕВА-200;
  • Пробирка позволяет получить все виды PRP (чистая PRP, янтарная (Amber) PRP, бедная лейкоцитами LP-PRP, богатая лейкоцитами LR-PRP).

Источники:

  1. Yigit Cakiroglu, Ayse Saltik, Aysen Yuceturk, Ozge Karaosmanoglu, Sule Yildirim Kopuk, Richard T. Scott Jr., Bulent Tiras, Emre Seli. Effects of intraovarian injection of autologous platelet rich plasma on ovarian reserve and IVF outcome parameters in women with primary ovarian insufficiency. AGING 2020, Vol. 12, No. 11
  2. Shin M. K., Lee J. H., Lee S. J., Kim N. I.: Platelet-rich plasma combined with fractional laser therapy for skin rejuvenation. Dermatol. Surg. 2012, 38, 623-630
  3. Systematic review of the use of platelet-rich plasma in aesthetic dermatology. J Cosmet Dermatol. 2015 Dec;14(4):315-23. doi: 10.1111/jocd.12167
  4. Pietrzak WS, Eppley BL. Platelet rich plasma: biology and new technology. J Craniofac Surg. 2005; 16:1043–54. https://doi.org/10.1097/01.scs.0000186454.07097.bf PMID: 16327552
  5. Dhurat R, Sukesh M. Principles and methods of preparation of platelet-rich plasma: a review and author’s perspective. J Cutan Aesthet Surg. 2014; 7:189–97. https://doi.org/10.4103/0974-2077.150734 PMID: 25722595
  6. Foster T. E., Puskas B. L., Mandelbaum B. R., Gerhardt M. B., Rodeo S. A.: Platelet-rich plasma: from basic science to clinical applications. Am. J. Sports Med. 2009, 37, 2259-2265; Lubkowska A., Dolegowska B., Banfi G.: Growth factor content in PRP and their applicability in medicine. J. Biol. Regul. Homeost. Agents. 2012, 26, 22-25; Textor J.: Platelet-Rich Plasma (PRP) as a Therapeutic Agent: Platelet Biology, Growth Factors and a Review of the Literature, [in:] Lana J. F. S. D., Santana A., Belangero D., Luzo M. (eds.): Platelet-Rich Plasma Regenerative Medicine: Sports Medicine, Orthopedics and Recovery of Musculoskeletal Injuries. XVII, 2014, Springer Pub.
  7. Sundman EA, Cole BJ, Karas V, Della Valle C, Tetreault MW, Mohammed HO, Fortier LA. The anti-inflammatory and matrix restorative mechanisms of platelet-rich plasma in osteoarthritis. Am J Sports Med. 2014; 42:35–41. https://doi.org/10.1177/0363546513507766 PMID: 24192391
  8. Choi BH, Zhu SJ, Kim BY, Huh JY, Lee SH, Jung JH. Effect of platelet-rich plasma (PRP) concentration on the viability and proliferation of alveolar bone cells: an in vitro study. Int J Oral Maxillofac Surg. 2005; 34:420–24. https://doi.org/10.1016/j.ijom.2004.10.018 PMID: 16053853
  9. Dohan Ehrenfest D. M., Doglioli P., de Peppo G. M., Del Corso M., Charrier J. B.: Choukroun’s platelet-rich fibrin (PRF) stimulates in vitro proliferation and differentiation of human oral bone mesenchymal stem cell in a dose-dependent way. Arch. Oral Biol. 2010, 55, 185-194; Fallouh L., Nakagawa K., Sasho T., Arai M., Kitahara S., Wada Y., Moriya H., Takahashi K.: Effects of autologous platelet-rich plasma on cell viability and collagen synthesis in injured human anterior cruciate ligament. J. Bone Joint Surg. Am. 2010, 92, 2909-2916; Foster T. E., Puskas B. L., Mandelbaum B. R., Gerhardt M. B., Rodeo S. A. Platelet-rich plasma: from basic science to clinical applications. Am. J. Sports Med. 2009, 37, 2259-2265.
  10. McLellan J., Plevin S.: Does it matter which platelet-rich plasma we use? Equine Vet. Educ. 2011, 23, 101-104; Pelletier M. H., Malhotra A., Brighton T., Walsh W. R., Lindeman R.: Platelet function and constituents of platelet rich plasma. Int. J. Sports Med. 2013, 34, 74-80; Castillo T. N., Pouliot M. A., Kim H. J., Dragoo J. L.: Comparison of growth factor and platelet concentrations from commercial platelet-rich plasma separation systems. Am. J. Sports Med. 2011, 39, 266-271.
  11. McLellan J., Plevin S.: Does it matter which platelet-rich plasma we use? Equine Vet. Educ. 2011, 23, 101-104; Pelletier M. H., Malhotra A., Brighton T., Walsh W. R., Lindeman R.: Platelet function and constituents of platelet rich plasma. Int. J. Sports Med. 2013, 34, 74-80
  12. Li Z. J., Choi H. I., Choi D. K., Sohn K. C., Im M., Seo Y. J., Lee Y. H., Lee J. H., Lee Y.: Autologous platelet-rich plasma: a potential therapeutic tool for promoting hair growth. Dermatol. Surg. 2012, 38, 1040-1046
  13. Sundman E. A., Cole B. J., Fortier L. A.: Growth factor and catabolic cytokine concentrations are influenced by the cellular composition of platelet-rich plasma. Am. J. Sports Med. 2011, 39, 2135-2140.
  14. Mishra A, Harmon K, Woodall J, et al. Sports medicine applications of platelet rich plasma. Curr Pharm Biotechnol 2012; 13(7): 1185–1195.
  15. Nepple JJ, Dunn WR, and Wright RW. Meniscal repair outcomes at greater than five years: a systematic literature review and meta-analysis. J Boint Joint Surg Am 2012; 94(24): 2222–2227; Ishida K, Kuroda R, Miwa M, et al. The regenerative effects of platelet-rich plasma on meniscal cells in vitro and its in vivo application with biodegradable gelatin hydrogel. Tissue Eng 2007; 13(5): 1103–1112.
  16. Lazzeri D., Nicoli F., Balzani A., Gentile P., Chilgar R. M., Di Pasquali C., Nicoli M., Bocchini I., Agovino A., Cervelli V.: Severe hidradenitis suppurativa treatment using platelet-rich plasma gel and Hyalomatrix. Int. Wound J. 2015, 12, 43-44; Vasconcelos E., Figueiredo A. C., Seghatchian J.: Quality of platelet concentrates derived by platelet rich plasma, buffy coat and apheresis. Transfus. Apher. Sci. 2003, 29, 13-16

Комментарии

(0) комментариев
Войти чтобы оставить комментарий